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Cat. Number
HK21610-96S
Chemical Name
HK21610-96S 植物叶绿体中果糖-1,6-二磷酸醛缩酶(FBA)测试盒(酶标板法)
Qty 1
100T/96S
References

果糖1,6-二磷酸醛缩酶(Fructose 1,6 bisphosphate aldolase,FBA)(EC4.1.2.13)是糖酵解、糖异生、磷酸戊糖途径及光合作用中参与calvin 循环的重要酶,催化果糖1,6-二磷酸可逆的裂解为磷酸二羟丙酮和3-磷酸甘油醛,广泛存在于动植物及微生物体内,在各种逆境胁迫下表现不同的响应。


测定原理:

植物组织中果糖1,6-二磷酸醛缩酶催化果糖1,6-二磷酸生成3-磷酸甘油醛和磷酸二羟丙酮,在磷酸丙糖异构酶和α-磷酸甘油脱氢酶作用下催化NADH 和磷酸二羟丙酮生成NAD和α-磷酸甘油,340nm 处吸光值的变化可反映果糖1,6-二磷酸醛缩酶活性的高低。


需自备的仪器和用品:

1、紫外分光光度计/酶标仪

2、天平

3、低温离心机

4、微量石英比色皿/96 孔UV 板

5、可调式移液枪

6、研钵/匀浆器、

漩涡震荡仪

7、超声破碎仪

8、冰。


产品组成:

试剂名称规格保存条件
提取液1液体×1 瓶2-8℃
提取液2液体×1 瓶2-8℃
试剂R1液体×1 瓶2-8℃
试剂R2粉剂×1 支液体×1 瓶
试剂R3粉剂×1 支2-8℃
试剂R4液体×1 支2-8℃
试剂R5液体×1 支-20℃


实验步骤:

注意:实验之前建议选择2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

一、样本处理(具体比例可以参考文献)

叶绿体FBA 酶的分离:

(1) 按照植物组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5-10 的比例(建议称取约0.1g 样本,加入1mL 提取液一),手工快速研磨或匀浆,之后于4℃,200g 离心5min;

(2) 弃沉淀,取上清在4℃,8000g 离心10min(离心时缓慢加速和降速);

(3) 取沉淀加1mL 提取液R2,震荡溶解后超声破碎(冰浴,200W,破碎3s,间歇7s,总时间1min),然后4℃,8000g 离心10min,上清即为叶绿体中FBA 酶活性。

二、试剂准备

1、试剂R2:临用前加入2 mL 蒸馏水,充分溶解,用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融;

2、试剂R3:临用前加入2 mL 蒸馏水充分溶解,用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融;

3、试剂R4:液体置于试剂瓶内EP 管中。临用前加入2 mL 蒸馏水充分溶解,用不完的试剂-分装后20℃保存,禁止反复冻融;

4、试剂R5:液体置于试剂瓶内EP 管中。临用前加入2 mL 蒸馏水充分溶解,用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。

三、测定步骤

1、分光光度计/酶标仪预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。

2、样本测定:

在微量石英比色皿/96孔UV板中分别加入下列试剂:

试剂(uL)测定管空白管
试剂R1100100
试剂R22020
试剂R32020
试剂R42020
试剂R52020
样本20-
蒸馏水-20
充分混匀后于340nm处测定10s时的吸光值A1,迅速置于25℃水浴5min(有控温功能的酶标仪可以将温度调至37℃或者25℃),拿出迅速擦干测定310s时的吸光值A2,分别记为A1测定、A2测定、A1空白和A2空白,计算ΔA测定管=A1测定-A2测定,ΔA空白管=A1空白-A2空白,ΔA=ΔA测定管-ΔA空白管。(空白管只需做1-2次)

注意:如果检测样本量大,可以将试剂R1、R2、R3、R4、R5按照5:1:1:1:1(V:V:V:V:V)的比例配成工作液待用(现配现用)。

四、FBA 酶活计算

A、按微量石英比色皿计算:

1、按蛋白浓度计算

酶活单位定义:每mg 组织蛋白每分钟消耗1nmol 的NADH 定义为一个酶活力单位。

FBA 酶活(U/mg prot)=ΔA÷(ε×d)×109×V 反总÷(V 样×Cpr) ÷T

2、按样本质量计算

酶活单位定义:每g 组织每分消耗1nmol 的NADH 定义为一个酶活力单位。

FBA 酶活(U/g 质量)=ΔA÷(ε×d)×109×V 反总÷(W ×V 样÷V 样总) ÷T

3、按照细胞或细菌数量计算

酶活单位定义:每104 个细胞或细菌每分钟消耗1nmol 的NADH 定义为一个酶活力单位。

FBA 酶活(U/104 cell)=ΔA÷(ε×d)×109×V 反总÷(V 样×细胞数量÷V 样总) ÷T

4、按液体体积计算

酶活单位定义:每mL 液体每分钟消耗1nmol 的NADH 定义为一个酶活力单位。

FBA 酶活(U/mL)=ΔA÷(ε×d)×109×V 反总÷V 样÷T

V 反总:反应体系总体积;

ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm;

d:比色皿光径,1cm;

V样:加入样本体积;

V 样总:加入提取液体积;

T:反应时间,5min;

Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL,蛋白浓度自行测定;

W:样本质量,g;

109:单位换算系数,1mol=109nmol。

B、按96 孔UV 板计算:

将上述公式中的d-1cm改为d-0.6cm(96孔板光径)进行计算即可。


注意事项:

1、若ΔA 大于0.8 建议将样本用相应提取液进行适当的稀释再进行测定,并在计算公式中乘以稀释倍数。

2、若是植物样本,建议在提取完成后2h 内检测完,如果样本量过大,建议分批提取、检测。

3、由于提取液1中含有一定浓度的蛋白(约0.5mg/mL),所以在测定样品蛋白浓度时需要减去提取液本身的蛋白含量。


本试剂盒仅供科研使用!

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