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Cat. Number
HK21550-96S
Chemical Name
HK21550-96S 氧化型谷胱甘肽(GSSG)含量测试盒(酶标板法)
Qty 1
100T/96S
References

氧化型谷胱甘肽(GSSG)是谷胱甘肽(GSH)的氧化形式,又称为二硫代谷胱甘肽,是两分子的谷胱甘肽氧化而成。GSSG 会被谷胱甘肽还原酶还原成GSH,因此机体中大多数是以还原型形式存在。测定细胞内GSH和GSSG 含量以及GSH/GSSG 比值,能够很好地反映细胞所处的氧化还原状态。


测定原理:

利用谷胱甘肽能和5,5'-二硫代-双-(2-硝基苯甲酸)(5,5'-dithiobis-2-nitrobenoic acid,DTNB)反应产生2-硝基-5-巯基苯甲酸,2-硝基-5-巯基苯甲酸在波长412nm处具有最大光吸收的特点,通过2-乙烯吡啶抑制样本中原有的还原型谷胱甘肽,然后利用谷胱甘肽还原酶将GSSG还原为GSH,借此测定氧化型谷胱甘肽的含量。


需自备的仪器和用品:

分析天平、匀浆器/研钵、低温离心机、水浴锅、移液器、可见分光光度计/酶标仪、微量玻璃比色皿/96孔板。


产品组成:

试剂名称规格保存条件
试剂R1液体×1 瓶2-8℃
试剂R2液体×1 瓶2-8℃
试剂R3液体×1 瓶2-8℃
试剂R4液体×1 瓶2-8℃
试剂R5粉剂×1 瓶2-8℃
试剂R6液体×1 瓶2-8℃
标准品粉剂×1 支2-8℃


实验步骤:

注意:实验之前建议选择2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

(1)组织处理

新鲜组织首先用PBS 冲洗2 次,然后称取动物组织或者植物组织0.1g。加入用试剂R1润洗过的匀浆器中(匀浆器提前放冰上预冷);然后加入1mL 试剂R1(组织/试剂R1比例保持不变即可),迅速冰上充分研磨(使用液氮研磨效果更好);8000g,4℃离心10min;取上清液放置于4℃待测,若暂时不能完成测试可放于-80℃保存(可保存10 天)。

(2)血液处理

血浆:将收集的抗凝血于4℃,600g 离心10 分钟,吸取上层血浆到另一支试管中,加入等体积的试剂R1,4℃,8000g离心10 分钟,将上清移入新的试管中放置于4℃待测,若暂时不能完成测试可放于-80℃保存(可保存10 天)。

血细胞:将收集的抗凝血于4℃,600g 离心10 分钟,弃去上层血浆用3 倍体积的PBS 清洗3 次(用PBS 重悬血细胞,600g 离心10 分钟),加入等体积试剂R1,混匀后4℃放置10 分钟,8000g 离心10 分钟,吸取上清放于4℃待测,若暂时不能完成测试可放于-80℃保存(可保存10 天)。

(3)细胞处理

收集不少于500 万个细胞,首先用PBS 清洗细胞2 次(PBS 重悬细胞,600g 离心10 分钟),加入1mL 试剂R1重悬细胞,反复冻融2-3 次(可在液氮中冻结,37℃水浴中溶解)或者进行超声(200W,超3s,停10s,重复30次),8000g 离心10 分钟,收集上清于4℃待测,若暂时不能完成测试可放于-80℃保存(可保存10 天)。

二、试剂准备

1、试剂R2:有毒易挥发试剂,涉及该试剂的步骤建议在通风橱内操作。

2、试剂R5:临用前加入2.5 mL 蒸馏水,溶解后-20℃分装保存;

3、试剂R6:液体置于试剂瓶内EP 管中。临用前根据样本量将试剂R6、蒸馏水按1:20(V:V)的比例配制备用,现用现配;

4、标准品:用1 mL 蒸馏水溶解,浓度为10 mg/mL,4℃保存。

三、测定步骤

1、分光光度计或酶标仪预热30min 以上,调节波长至412nm,分光光度计蒸馏水调零。

2、试剂R2放置37℃(哺乳动物)或25℃(一般物种)水浴中保温30min。

3、标准品的稀释:取适当溶液配制浓度为125μg/mL、62.5μg/mL、31.25μg/mL、15.625μg/mL、7.8125μg/mL、3.90625μg/mL、0μg/mL 的标准品(试剂R1十倍稀释后进行稀释)。

4、取0.5mL 离心管,加入20μL 稀释好的标准品或样本,加入1μL 试剂R2,混匀后37℃孵育30 分钟。

5、测定表:在0.5mL 离心管中依次加入

试剂名称(uL)标准管测定管
稀释好的标准品20-
样本-20
试剂R211
                                                                        混匀后37℃孵育30 分钟
试剂R3140140
试剂R42020
试剂R52020
试剂R622
标准管:加入试剂R6即开始计时,迅速混匀后,测定412nm 处30s 和150s 光吸收A1 和A2,计算ΔA标准=A2-A1。
测定管:加入试剂六即开始计时,迅速混匀后,测定412nm 处30s 和150s 光吸收A1 和A2,ΔA 测定= A2-A1。

四、GSSG含量计算

以吸光度(ΔA 标准-ΔA 空白)为横坐标(x),浓度为纵坐标(y)做标准曲线。根据标准曲线,将样本(ΔA 测定-ΔA 空白)带入公式中(x),计算出样本浓度y(μg/mL)。

(1)按蛋白浓度计算

GSSG(μg/mg prot)=y×V 样÷(V 样×Cpr )

(2)按样本质量计算

GSSG(μg/g 质量)=y×V 样÷(V 样÷V 样总×W)

(3)按细胞数量计算

GSSG(μg/106 cell)=y×V 样÷(V 样÷V 样总×细胞数量)

(4)按液体体积计算

GSSG(μg/mL)=2y

V 样总:上清液总体积;

V 样:加入反应体系中上清液体积;

W:样本质量,g;

Cpr:上清液蛋白质浓度,mg/mL;

细胞数量:以106 单位计量;

2:血浆(血细胞)稀释一倍。


注意事项:

1、样本处理需匀浆完全,若当天不能完成测量,可放-80℃保存。

2、若不确定样本中GSSG 含量的高低,可稀释几个梯度后再进行测量。

3、此方法利用酶促反应速率计算底物浓度,尽量准确在30 秒和150 秒处完成读数。

4、如果测定吸光值超过线性范围吸光值,可以增加样本量或者稀释样本后再进行测定。

5、如果样本量过多,可将试剂R3与试剂R6按照比例混匀配成工作液,在最后一步加入,加入工作液即开始计时。用多少配多少。

6、因为试剂R1中含有蛋白质沉淀剂,因此上清液不能用于蛋白浓度测定。如需测定蛋白含量,需另取组织。


本试剂盒仅供科研使用!


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