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/ Products Classification 点击展开+Cat. Number | HK21538-48S |
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Chemical Name | HK21538-48S 线粒体呼吸链复合体Ⅴ活性测试盒(酶标板法) |
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Qty 1 |
100T/48S |
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References | 线粒体复合体Ⅴ又称F1F0-ATP合酶,广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞的线粒体中,由F1和F0两个亚单位组成。该酶利用呼吸链产生的质子电化学梯度催化ATP合成,也可逆过程水解ATP。此外,复合体Ⅴ还存在于叶绿体、异养菌和光合细菌中。复合体Ⅴ是线粒体氧化磷酸化和叶绿体光合磷酸化合成ATP的关键酶。 测定原理: 复合体Ⅴ水解ATP产生ADP和Pi,通过测定Pi增加速率来测定复合体Ⅴ活性。 需自备的仪器和用品: 台式离心机、可见分光光度计/酶标仪、水浴锅、微量玻璃比色皿/96 孔板、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。 产品组成:
实验步骤: 注意:实验之前建议选择2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。 一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献) 1. 称取约0.1g 组织或收集500 万细胞,加入1.0 mL 提取液,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。 2. 4 ℃ 600g 离心10min。 3. 将上清液移至另一离心管中,4 ℃ 11000g 离心15min。 4. 上清液即胞浆提取物,可用于测定从线粒体泄漏的复合体Ⅴ(此步可选做,可以判断线粒体提取效果)。 5. 在沉淀中加入600μL 试剂R1,超声波破碎(功率20%,超声5 秒,间隔10 秒,重复12 次),用于复合体Ⅴ酶活性测定,并且用于蛋白含量测定。 二、试剂准备 1. 试剂R2:临用前每支加入1.11 mL 双蒸水,充分溶解备用,分装后-20℃保存,避免反复冻融; 2. 试剂R4:临用前加入3 mL 双蒸水,充分混匀; 3. 试剂R5:临用前加入8 mL 双蒸水,充分混匀; 4. 试剂R6:临用前加入8 mL 双蒸水,充分混匀; 5. 标准品:10 μmol/mL 磷标液,临用前用蒸馏水稀释40 倍即0.25 μmol/mL 磷标准液。 6. 定磷试剂的配制:按H2O:试剂R5:试剂R6:试剂R7=2:1:1:1 的比例配制,配好的定磷试剂应为浅黄色。 若无色则试剂失效,若是蓝色则为磷污染(请根据需要,用多少配多少)。 注意:配试剂最好用新的烧杯、玻璃棒和玻璃移液器,或者一次性塑料器皿,以避免磷污染。 三、测定步骤 1.可见分光光度计/酶标仪预热30min 以上,调节波长至660nm,蒸馏水调零。 2.样本测定: (1) 酶促反应
(2) 定磷
混匀,40℃水浴10min,尽快在660nm 测定吸光值,分别记为A 对照管、A 测定管、A 标准管、A 空白管,计算ΔA 测定=A 测定管-A 对照管,ΔA 标准=A 标准管-A 空白管。 四、复合体Ⅴ活性计算 单位的定义:每mg 组织蛋白在反应体系中每分钟产生1 nmol 无机磷定义为一个酶活性单位。 复合体Ⅴ活性(U/mg prot)=ΔA 测定÷ΔA 标准×C 标准×V 酶促×1000÷(Cpr×V 样本)÷T C 标准:标准溶液浓度; 1000:单位换算系数,1μmol=1000nmol; Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL,需自行测定; V 样本:样本体积; V 酶促:酶促反应总体积; T:反应时间,30min。 注意事项: 1. 为保证实验结果的准确性,需先取1-2 个样做预实验,如果测定的吸光值过高(高于1),可用蒸馏水稀释上清液后再测定。计算结果时注意乘以稀释倍数。 2. 由于提取液中含有蛋白(约1mg/mL),所以在测定样本蛋白浓度时需要减去提取液本身的蛋白含量(单独测定)。 3. 测定胞浆时,定磷后反应液可能会有絮凝产生,测定前混合均匀即可,并不影响测定结果。 4. 推荐使用样本蛋白浓度计算酶活,若用样本质量计算,则需加测胞浆提取物酶活,上清和沉淀酶活之和方为总酶活。 5. 本试剂盒试剂足够完成100 管反应。 6. 附:使用样本重量计算公式:(样本检测数为100T/24S) A、上清中复合体Ⅴ活力的计算: 单位的定义:每g 组织在反应体系中每分钟产生1nmol 无机磷定义为一个酶活性单位。 复合体Ⅴ活性(U/g 质量)=ΔA1÷ΔA 标准×C 标准×V 酶促×1000÷(W÷V 提取×V 样本))÷T ΔA1:上清测定值; C 标准:标准溶液浓度; 1000:单位换算系数,1μmol=1000nmol; V 提取:加入提取液体积; V 样本:样本体积; V 酶促:酶促反应总体积; T:反应时间,30min。 B、沉淀中复合体Ⅴ活力的计算: 单位的定义:每g 组织在反应体系中每分钟产生1 nmol 无机磷定义为一个酶活性单位。 复合体Ⅴ活性(U/g 质量)=ΔA2÷ΔA 标准×C 标准×V 酶促×1000÷(W÷V 提取×V 样本))÷T ΔA2:沉淀测定值; C 标准:标准溶液浓度; 1000:单位换算系数,1μmol=1000nmol; V 提取:沉淀重悬体积; V 样本:样本体积; V 酶促:酶促反应总体积; T:反应时间,30min。 C、样本复合体Ⅴ总活力的计算: 样本复合体Ⅴ总活力即为上清中复合体Ⅴ活力与沉淀中复合体Ⅴ活力之和。 按样本质量计算:复合体Ⅴ(U/g 质量)=20×ΔA1÷ΔA 标准÷W+12×ΔA2÷ΔA 标准÷W 本试剂盒仅供科研使用! |
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