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Cat. Number
HK21422-48S
Chemical Name
HK21422-48S 糖原磷酸化酶b(GPb)测试盒(酶标板法)
Qty 1
100T/48S
References

糖原磷酸化酶是糖原分解代谢中的关键酶,催化糖原的磷酸化反应。该酶分为有活性的糖原磷酸化酶a(Glycogen phosphorylase a, GPa)和无活性的糖原磷酸化酶b(Glycogen phosphorylase b, GPb)两种形式。


检测原理:

糖原的分解主要在糖原磷酸化酶a的催化下进行。未添加激活剂时,糖原磷酸化酶a催化糖原和无机磷产生葡萄糖残基生成糖原和1-磷酸葡萄糖,磷酸葡萄糖变位酶和6-磷酸葡萄糖脱氢酶进一步依次催化NADP还原生成NADPH,在340nm下测定NADPH上升速率,即可反映糖原磷酸化酶a活性。添加激活剂测定GP(GPa和GPb)总活性,未添加激活剂时测定GPa活性,GP活性-GPa活性得到GPb活性。


需自备的仪器和用品:

紫外分光光度计/酶标仪、低温离心机、恒温培养箱/水浴锅、研钵/匀浆器、电子天平、可调式移液器、微量石英比色皿/96孔UV板、冰和蒸馏水。


产品组成:

试剂名称规格保存条件
提取液液体×1瓶2-8℃
试剂R1液体×1瓶2-8℃
试剂R2粉剂×1支2-8℃
试剂R3粉剂×1支2-8℃
试剂R4粉剂×1支2-8℃
试剂R5粉剂×2支2-8℃
试剂R6粉剂×2支2-8℃
试剂R7粉剂×1瓶2-8℃


实验步骤:

注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

1、组织:按照组织质量(g)︰提取液体积(mL)为1∶5~10的比例(建议称取约0.1 g组织,加入1 mL提取液)进行冰浴匀浆,然后8000 g,4℃,离心10 min,取上清置于冰上待测。

2、血清(浆):直接检测。若有浑浊可以离心后取上清进行测定。

3、细菌或者细胞:先收集细胞或细菌样本到离心管内,弃上清,按照每500万细胞或细菌加入1mL提取液,超声波破碎细菌或细胞(功率200W,超声3s,间隔10s,重复30次)。8000g,4C离心10min,取上清,置冰上待测。

二、试剂准备

1、 试剂R2:临用前加入0.5 mL蒸馏水,充分混匀;

2、 试剂R3:临用前加入0.5mL蒸馏水,充分混匀;可分装后-20℃保存4周,避免反复冻融;

3、 试剂R4:临用前加入1.25 mL蒸馏水,充分混匀;可分装后-20℃保存4周,避免反复冻融;

4、 试剂R5:临用前每支加入1 mL蒸馏水,充分混匀;可分装后-20℃保存4周,避免反复冻融;一支即可做100T,为延长试剂盒使用时间故多给一支。

5、 试剂R6:临用前每支加入1 mL蒸馏水,充分混匀;可分装后-20℃保存4周,避免反复冻融;一支即可做100T,为延长试剂盒使用时间故多给一支。

6、 试剂R7:临用前加入2 mL蒸馏水,充分混匀;可分装后-20℃保存4周,避免反复冻融;

7、 工作液的配制:临用前根据实验所需用量,按照试剂R1:试剂R2:试剂R3:试剂R4 =148μL: 4μL: 4μL: 4μL(1T的量)的比例,充分混匀,现用现配。

三、测定步骤

l、紫外分光光度计/酶标仪预热30 min以上,调节波长至340 nm,分光光度计蒸馏水调零。

2、工作液置于37℃预热5min。

3、GPa活性:在石英比色皿或96孔UV板中依次加入

试剂名称(uL)GPa活性检测
样本10
试剂R510
试剂R610
蒸馏水10
工作液160
充分混匀10s,记录340nm处10s时吸光值A1,37℃水浴锅或者恒温培养箱反应10min(酶标仪有控温功能的可以调节温度至37C),反应后拿出迅速擦干测定10min10s时吸光值A2。计算ΔAcPa=A2-A1。

4、GP活性:在石英比色皿或96孔UV板中依次加入

试剂名称(uL)GP活性检测
样本10
试剂R510
试剂R610
试剂R710
工作液160
充分混匀10s,记录340nm处10s时吸光值A1,37℃水浴锅或者恒温培养箱反应10min(酶标仪有控温功能的可以调节温度至37C),反应后拿出迅速擦干测定10min10s时吸光值A2。计算ΔAcPa=A2-A1。

四、糖原磷酸化酶b(GPb)活性计算

a.用微量石英比色皿测定的计算公式如下:

(1)按样本蛋白浓度计算

单位定义:每 mg组织蛋白每分钟产生1nmol NADPH定义为一个酶活力单位。

GPb(U/mg prot))=(ΔAcp-ΔAcPa)×V反总÷(εxd)×109]÷(V样×Cpr)÷T

(2)按样本鲜重计算

单位定义:每g组织每分钟产生1nmol NADPH定义为一个酶活力单位。

GPb (U/g质量)=[(ΔAcp-ΔAca)×V反总÷(ε×d)×109]÷(W×V样÷V样总)÷T

(3)按样本体积计算

单位定义:每mL液体每分钟产生1nmol NADPH定义为一个酶活力单位

GPa (U/mL)=[(ΔAcp-ΔAGPa)×V反总÷(εxd)×109]÷V样÷T

(4)按细胞数量计算

单位定义:每1万个细胞每分钟产生lnmol NADPH定义为一个酶活力单位。

GPa (U/104 cell)=[(ΔAap-ΔAcPa)×V反总÷(εxd)×109]÷(细胞数量xV样÷V样总)÷T

V反总:反应体系总体积; 

ε:NADPH 摩尔消光系数,6.22×103 L/molcm;

d:比色皿光径,1cm;

V样:加入样本体积;

V样总:加入提取液体积;

T:反应时间,10 min;

Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL; 

W:样本质量,g;

细胞数量:以万计;

109:1mol=109nmol。

b.用96孔板测定的计算公式如下:

将上述公式中的d-1cm修改为d-0.6cm (96孔板光径)并进行计算即可。


注意事项:

1、如果测定吸光值△A>0.6,建议稀释样本后再测定,计算公式中乘以稀释倍数;如果测定吸光值较低或接近空白OD值,建议增加样本量后再进行测定。


本试剂盒仅供科研使用!

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