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Cat. Number
HK21319-96S
Chemical Name
HK21319-96S 果糖-6-磷酸-1-磷酸转移酶(PFP)测试盒(酶标板法)
Qty 1
100T/96S
References

焦磷酸:果糖-6-磷酸-1-磷酸转移酶(PFP,EC2.7.1.90)是一种胞质酶,广泛存在于植物组织中,与磷酸果糖激酶一样催化果糖-6-磷酸的磷酸化,单PEP 催化反应为可逆反应,并以焦磷酸代替ATP,在光合作用碳代谢中起重要作用。


测定原理:

PFP 催化6-磷酸果糖转化为1,6-二磷酸果糖,它在醛缩酶和磷酸丙糖异构酶的作用下转变为磷酸二羟丙酮,再由α-磷酸甘油脱氢酶和NADH 催化生成3-二磷酸甘油和NAD,340nm 处的吸光度变化反映了PFP 的活性的高低。


需自备的仪器和用品:

可见分光光度计/酶标仪、低温离心机、水浴锅/恒温培养箱、微量石英比色皿/96 孔UV 板、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水、EP 管。


产品组成:

试剂名称规格保存条件
提取液液体×1 瓶2-8℃
试剂R1液体×1 瓶2-8℃
试剂R2粉剂×1 瓶-20℃
试剂R3粉剂×1 瓶-20℃
试剂R4粉剂×2 支2-8℃
试剂R5粉剂×1 支-20℃
试剂R6液体×1 支2-8℃


实验步骤:


注意:实验之前建议选择2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

1、组织:按照质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10 的比例(建议称取约0.1 g,加入1 mL 提取液)加入提取液,冰浴匀浆后于4℃,20000g 离心15min,取上清置冰上待测;

2、细胞:按照细胞数量(104 个):提取液体积(mL)为500~1000:1 的比例(建议500 万细胞加入1 mL提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3 s,间隔7 s,总时间3 min);然后4℃,20000g 离心15min,取上清置冰上待测;

3、液体:直接检测。

二、试剂准备

1、试剂R2:临用前加2.5 mL 蒸馏水充分溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存两周,禁止反复冻融。

2、试剂R3:临用前加2.5 mL 蒸馏水充分溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存两周,禁止反复冻融。

3、试剂R4:临用前取1 支加入0.3mL 蒸馏水溶解,4℃保存一周。(1 支溶解后可做100T,为了延长使用时间,此产品多给1 支粉剂)

4、试剂R5:临用前加入0.3 mL 蒸馏水溶解,-20℃分装保存两周,禁止反复冻融。

5、试剂R6:临用前加入0.3 mL 蒸馏水溶解,4℃保存一周,也可按比例现用现配。

三、测定步骤

1、分光光度计/酶标仪预热30 min 以上,调节波长至340 nm,蒸馏水调零。

2、操作表:

试剂名称(uL)测定管空白管
试剂R1134134
试剂R22020
试剂R32020
试剂R422
试剂R522
试剂R622
样本
20-
蒸馏水-20
充分混匀后于微量石英比色皿/96 孔UV 板中测定37℃条件下,340 nm 处初始值A1 和30 min 的吸光值A2,分别记为A1 测定管、A1 空白管、A2 测定管,A2 空白管。计算 ΔA= (A1 测定管-A2 测定管)-(A1 空白管-A2空白管)。

注:也可将试剂R1、R2、R3、R4、R5、R6按操作表比例,配制成工作液,现配现用;空白管只需做1-2 次。

四、焦磷酸:果糖-6-磷酸-1-磷酸转移酶活性的计算

1、按微量石英比色皿计算:

(1)按照样本蛋白浓度计算

酶活单位定义:每毫克组织蛋白每分钟消耗1 nmol 的NADH 定义为一个酶活力单位。

PFP(U/mg prot)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(V 样×Cpr) ÷T

(2)按照样本质量计算

酶活单位定义:每克组织每分钟消耗1 nmol 的NADH 定义为一个酶活力单位。

PFP(U /g 质量)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(W×V 样÷V 提取) ÷T

(3)按照细胞数量计算

酶活单位定义:每104 个细胞每分钟消耗1 nmol 的NADH 定义为一个酶活力单位。

PFP(U /104 cell)= ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(V 样×细胞数量÷V 提取) ÷T

(4)按照液体体积计算

酶活单位定义:每毫升液体每分钟消耗1 nmol 的NADH 定义为一个酶活力单位。

PFP(U /mL)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷V 样÷T

V 反总:反应体系总体积;

ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm;

d:比色皿光径,1 cm;

V样:加入样本体积;

V 提取:加入提取液体积;

T:反应时间,30 min;

Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;

W:样本质量,g;

109:换算系数,1mol=109 nmol。

2、按96 孔UV 板计算:

将上述公式中的d=1cm 修改为d-0.6cm(96 孔UV 板光径)进行计算即可。


注意事项:

1、每次检测样本数不宜太多以免耽误过多的酶促反应时间。


本试剂盒仅供科研使用!

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