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/ Products Classification 点击展开+Cat. Number | HK21319-96S |
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Chemical Name | HK21319-96S 果糖-6-磷酸-1-磷酸转移酶(PFP)测试盒(酶标板法) |
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Qty 1 |
100T/96S |
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References | 焦磷酸:果糖-6-磷酸-1-磷酸转移酶(PFP,EC2.7.1.90)是一种胞质酶,广泛存在于植物组织中,与磷酸果糖激酶一样催化果糖-6-磷酸的磷酸化,单PEP 催化反应为可逆反应,并以焦磷酸代替ATP,在光合作用碳代谢中起重要作用。 测定原理: PFP 催化6-磷酸果糖转化为1,6-二磷酸果糖,它在醛缩酶和磷酸丙糖异构酶的作用下转变为磷酸二羟丙酮,再由α-磷酸甘油脱氢酶和NADH 催化生成3-二磷酸甘油和NAD,340nm 处的吸光度变化反映了PFP 的活性的高低。 需自备的仪器和用品: 可见分光光度计/酶标仪、低温离心机、水浴锅/恒温培养箱、微量石英比色皿/96 孔UV 板、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水、EP 管。 产品组成:
实验步骤: 注意:实验之前建议选择2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。 一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献) 1、组织:按照质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10 的比例(建议称取约0.1 g,加入1 mL 提取液)加入提取液,冰浴匀浆后于4℃,20000g 离心15min,取上清置冰上待测; 2、细胞:按照细胞数量(104 个):提取液体积(mL)为500~1000:1 的比例(建议500 万细胞加入1 mL提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3 s,间隔7 s,总时间3 min);然后4℃,20000g 离心15min,取上清置冰上待测; 3、液体:直接检测。 二、试剂准备 1、试剂R2:临用前加2.5 mL 蒸馏水充分溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存两周,禁止反复冻融。 2、试剂R3:临用前加2.5 mL 蒸馏水充分溶解;用不完的试剂分装后-20℃保存两周,禁止反复冻融。 3、试剂R4:临用前取1 支加入0.3mL 蒸馏水溶解,4℃保存一周。(1 支溶解后可做100T,为了延长使用时间,此产品多给1 支粉剂) 4、试剂R5:临用前加入0.3 mL 蒸馏水溶解,-20℃分装保存两周,禁止反复冻融。 5、试剂R6:临用前加入0.3 mL 蒸馏水溶解,4℃保存一周,也可按比例现用现配。 三、测定步骤 1、分光光度计/酶标仪预热30 min 以上,调节波长至340 nm,蒸馏水调零。 2、操作表:
四、焦磷酸:果糖-6-磷酸-1-磷酸转移酶活性的计算 1、按微量石英比色皿计算: (1)按照样本蛋白浓度计算 酶活单位定义:每毫克组织蛋白每分钟消耗1 nmol 的NADH 定义为一个酶活力单位。 PFP(U/mg prot)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(V 样×Cpr) ÷T (2)按照样本质量计算 酶活单位定义:每克组织每分钟消耗1 nmol 的NADH 定义为一个酶活力单位。 PFP(U /g 质量)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(W×V 样÷V 提取) ÷T (3)按照细胞数量计算 酶活单位定义:每104 个细胞每分钟消耗1 nmol 的NADH 定义为一个酶活力单位。 PFP(U /104 cell)= ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(V 样×细胞数量÷V 提取) ÷T (4)按照液体体积计算 酶活单位定义:每毫升液体每分钟消耗1 nmol 的NADH 定义为一个酶活力单位。 PFP(U /mL)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷V 样÷T V 反总:反应体系总体积; ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103 L/mol/cm; d:比色皿光径,1 cm; V样:加入样本体积; V 提取:加入提取液体积; T:反应时间,30 min; Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL; W:样本质量,g; 109:换算系数,1mol=109 nmol。 2、按96 孔UV 板计算: 将上述公式中的d=1cm 修改为d-0.6cm(96 孔UV 板光径)进行计算即可。 注意事项: 1、每次检测样本数不宜太多以免耽误过多的酶促反应时间。 本试剂盒仅供科研使用! |
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