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/ Products Classification 点击展开+Cat. Number | HK21316-24S |
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Chemical Name | HK21316-24S 碱性木聚糖酶(BAX)测试盒(可见分光光度法) |
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Qty 1 |
50T/24S |
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References | 木聚糖酶(EC 3.2.1.8)主要由微生物产生,能催化水解木聚糖,也被称为戊聚糖酶或半纤维素酶,可分解酿造或饲料工业中的原料细胞壁以及β-葡聚糖,降低酿造中物料的粘度,促进有效物质的释放,以及降低饲料中的非淀粉多糖,促进营养物质的吸收利用,因而广泛的应用于酿造和饲料工业中,碱性木聚糖酶(BAX)一般分离自最适生长pH为9-11的微生物。 测定原理: BAX在碱性环境中催化木聚糖降解成还原性寡糖和单糖,在沸水浴条件下进一步与3,5-二硝基水杨酸发生显色反应,在540nm处有特征吸收峰,反应液颜色的深浅与酶解产生的还原糖量成正比,通过测定反应液在540nm吸光值增加速率,可计算BAX活力。 需自备的仪器和用品: 可见分光光度计、1mL玻璃比色皿、天平、低温离心机、水浴锅、研钵/匀浆器、蒸馏水。 产品组成:
实验步骤: 注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。 一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献) 1. 细菌或细胞的处理:收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照每500万细菌或细胞加入1mL提取液,超声波破碎,(冰浴,功率200W,超声开3秒,关10秒,重复30次);8000g,4℃离心10min,取上清,置冰上待测。 2. 组织的处理:称取约0.1g 组织加入1mL提取液,冰浴中匀浆。8000g,4℃下离心10min,取上清,置冰上待测。 3. 血清(浆)的处理:吸取0.1mL血清(浆),加入0.9mL提取液,冰浴中匀浆。8000g,4℃下离心10mir取上清,置冰上待测。 二、试剂准备 1. 标准品: 10mg木糖。临用前加入667uL蒸馏水配制成100umol/mL 的木糖标准液,2-8°C保存两周。 三、测定步骤 1、分光光度计预热30min 以上,调节波长至540nm,用蒸馏水调零。 2、标准溶液的制备:取20uL 100umol/mL的木糖标准液,加入980uL蒸馏水,充分混匀,配制成2umol/mL的标准 溶液使用,现用现配。(实验中每管需要60uL,为减小实验误差,故配制大体积)。 3、 样本测定(在EP管中依次加入下列试剂):
四、BAX计算公式 1. 发酵液BAX活力计算: 酶活定义:50℃,pH 9.0条件下,每毫升发酵液每分钟分解木聚糖产生1μmol还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。 BAX活力(U/mL)=C标准×ΔA测定÷ΔA标准÷T C标准:木糖标准溶液浓度; T:反应时间,30min。 2. 酶干粉BAX活力计算: 酶活定义:50℃,pH 9.0条件下,每毫克酶每分钟分解木聚糖产生1μmol还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。 BAX活力(U/mg 质量)= 10×C标准×ΔA测定÷ΔA标准×V提取÷W1÷T 10:样本稀释倍数,10倍; C标准:木糖标准溶液浓度; V提取:加入缓冲液体积; W1:酶干粉重量,mg; T:反应时间,30min。 3. 组织中BAX活力计算: (1)按样本蛋白浓度计算: 酶活定义:50℃,pH 9.0条件下,每mg组织蛋白每分钟分解木聚糖产生1μmol还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。 BAX活力(U/mg prot)= 10×C标准×ΔA测定÷ΔA标准×V样本÷(V样本×Cpr)÷T (2)按样本质量计算: 酶活定义:50℃,pH 9.0条件下,每克组织每分钟分解木聚糖产生1μmol还原糖所需的酶量为一个碱性木聚糖酶的活力单位。 BAX活力(U/g 质量)=10×C标准×ΔA测定÷ΔA标准×V提取÷W2÷T 10:样本稀释倍数,10倍; C标准:木糖标准溶液浓度; V提取:加入缓冲液体积; W2:样本质量,g; T:反应时间,30min; Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL; V样本:加入的样本量。 注意事项: 吸光度变化应该控制在0.01~1之间,否则加大样本量或稀释样本,注意计算公式中参与计算的稀释倍数要相应改变。 本试剂盒仅供科研使用! |
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