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Cat. Number
HK21277-48S
Chemical Name
HK21277-48S 果胶裂解酶测试盒(可见分光光度法)
Qty 1
50T/48S
References

果胶裂解酶(EC.4.2.2.10)是果胶酶的重要组成部分,催化果胶分子链的消除裂解。来源比较广泛,主要来源于微生物,在食品加工工业中提高果汁产量方面有重要意义,在减少环境污染和降低能源消耗方面也具有潜在的应用价值。


检测原理:

果胶裂解酶作用于果胶中的α-1,4 糖苷键,生成在还原端C4和C5之间位置具有不饱和键的不饱和寡聚半乳糖醛酸,在235nm处有特征吸收峰,测定235nm下吸光度的上升来表示果胶裂解酶的活性。


需自备的仪器和用品:

紫外分光光度计、台式离心机、恒温水浴锅、1mL石英比色皿、可调式移液枪、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。


产品组成:

试剂名称规格保存条件
提取液液体×1 瓶2-8℃
试剂R1液体×1 瓶2-8℃


实验步骤:

注意:实验之前建议选择2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

1.组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10 的比例(建议称取约0.1g 组织,加入1mL 提取液),进行冰浴匀浆。10000g ,4℃离心10min,取上清,置冰上待测。

2.细菌、真菌:按照细胞数量(104 个):提取液体积(mL)为500~1000:1 的比例(建议500 万细胞加入1mL提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3 秒,间隔7 秒,总时间3min);然后10000g,4℃离心10min,取上清置于冰上待测。

3. 培养液:直接测定。

二、试剂准备

试剂R1:溶液中如果有沉淀存在,可以50℃水浴助溶。

三、测定步骤

1、分光光度计预热30min 以上,调节波长至235nm,蒸馏水调零。

2、操作表:(1.5mL离心管中)

试剂名称(uL)测定管空白管
试剂R1900900
酶液100-
蒸馏水-100
充分混匀后测定235nm下的初始值A1,40℃反应30min 后再次测定吸光值A2,计算ΔA 测定管=A2 测定管-A1 测定管,ΔA 空白管= A2 空白管-A1 空白管,ΔA=ΔA 测定管-ΔA 空白管。

四、果胶裂解酶活性计算

1. 按照蛋白浓度计算

酶活性定义:在40℃,pH5.5 条件下,每毫克蛋白每分钟分解果胶产生1nmol 不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。

PL 活性(U/mg prot)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(V 样×Cpr)÷T

2. 按照样本质量计算

酶活性定义:在40℃,pH5.5 条件下,每克组织每分钟分解果胶产生1nmol 不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。

PL 活性(U/g 质量)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(V 样×W÷V 样总)÷T

3. 按照细菌、真菌数量计算

酶活性定义:在40℃,pH5.5 条件下,每104 个细胞每分钟分解果胶产生1nmol 不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。

PL 活性(U/104 cell)= ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷(V 样×细胞数量÷V 样总)÷T

4. 按照培养液体积计算

酶活性定义:在40℃,pH5.5 条件下,每毫升培养液每分钟分解果胶产生1nmol 不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。

PL 活性(U/mL)=ΔA÷(ε×d)×V 反总×109÷V 样÷T

ε:不饱和半乳糖醛酸摩尔消光系数:5200 L/mol/cm;

d:比色皿光径,1cm;

V 反总:反应总体积;

V 样:反应体系中样本体积;

V 样总:加入提取液体积;

Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL;

W,样本质量,g;

T:反应时间,30min;

109:换算系数,1mol=109nmol。


注意事项:

1、若ΔA 大于0.5,将粗酶液用蒸馏水稀释后再进行测定。若A 测定管大于1.5 时,建议将样本用蒸馏水稀释后再进行测定。

2、建议一次测定不要测定过多样本以免耽误过多的酶促反应时间。

3、空白管正常情况下变化不超过0.02。


本试剂盒仅供科研使用!

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