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Cat. Number
HK21187-48S
Chemical Name
HK21187-48S β-葡萄糖苷酶(β-GC)测试盒 (酶标板法)
Qty 1
100T/48S
References

β-葡萄糖苷酶β-GC(EC 3.2.1.21)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,催化β-糖苷键水解,具有多方面生理作用:在纤维素的糖化作用中,β-GC负责进一步水解纤维素二糖和纤维素寡糖生成葡萄糖;β-GC水解萜烯类香气前驱体,使糖苷键合态变成游离态。从而产生香味;β-GC能够水解植物体内野黑樱苷,释放HCN,从而防止昆虫取食。


测定原理:

β-葡萄糖苷酶β-GC分解对-硝基苯-β-D-吡喃葡萄糖苷生成对-硝基苯酚,后者在400nm有最大吸收峰,通过测定吸光值升高速率来计算β-GC活性。


需自备的仪器和用品:

可见分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅/恒温培养箱、可调式移液器、超声破碎仪、微量玻璃比色皿/96孔板、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。


产品组成:

试剂名称规格保存条件
提取液液体×1 瓶2-8℃
试剂R1粉剂×2 瓶-20℃
试剂R2液体×1 瓶2-8℃
试剂R3液体×1 瓶2-8℃
标准品液体×1 支2-8℃


实验步骤:

注意:实验之前建议选择2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

1、细菌或培养细胞的处理:收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(10个):提取液体积(mL)为500~1000: 1的比例(建议1000万细菌或细胞加入1mL 提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率200W,超声3s,间隔10s,重复30次),15000g,4C条件下离心20min,取上清,置冰上待测。

2、组织的处理:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.2g组织,加入1mL 提取液),进行冰浴匀浆;15000g,4C条件下离心20min,取上清,置冰上待测。

二、试剂准备

1、试剂R1:临用前取1瓶加入6 mL蒸馏水,充分溶解;用不完的试剂-20C分装保存4周,避免反复冻融;

2、标准品:5 umol/mL的对硝基苯酚溶液。

三、测定步骤

1、分光光度计或酶标仪预热30min以上,调节波长至400nm,分光光度计用蒸馏水调零。

2、标准液的稀释:临用前将5umolmL标准液稀释至100、50、25、12.5、6.25、0 nmolmL标准溶液待测。

3、标准液稀释可参考下表:

试剂名称(uL)测定管对照管标准管
试剂R1120--
试剂R2150150-
样本3030-
充分混匀,放入37℃水浴锅/恒温培养箱中准确水浴30min后,立即放入沸水浴中煮沸5min(盖紧,以防止水分散失),流水冷却后充分混匀(以保证浓度不变)
试剂R1-120-
                                     充分混匀,8000g,4℃离心5min,取上清液待测
上清液7070-
标准液--70
试剂R3130130130

充分混匀,室温静置2min后,400nm处测定吸光值A,分别记为A测定、A对照、A标准、A空白。计算ΔA测定=A测定-A对照,ΔA标准=A标准-A空白。每个测定管需设一个对照管。标准曲线和空白管只需测1-2次。

四、β-GC 酶活的计算

1、标准曲线建立:

根据标准管的浓度(x,nmol/mL)和吸光度(y,ΔA标准),建立标准曲线。根据标准曲线,将ΔA(y,ΔA测定)带入公式计算样本产物浓度x(nmol/mL)。

2、按样本蛋白浓度计算

单位的定义:每mg组织蛋白每小时产生1nmol对-硝基苯酚定义为一个酶活力单位。

β-GC活力(U/mg prot)=(x×V反总)÷(V样×Cpr)÷T

3、按样本质量计算

单位的定义:每g组织在每小时产生1nmol对-硝基苯酚定义为一个酶活力单位。

β-GC活力(U/g 质量) = (x×V反总)÷(W×V样÷V样总)÷T

4、按细菌或细胞数量计算

单位的定义:每1万个细菌或细胞每小时产生1nmol对-硝基苯酚定义为一个酶活力单位。

β-GC活力(U/104 cell)=(x×V反总)÷(1000×V样÷V样总)÷T

Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL,蛋白浓度需要另外测定;

V反总:反应体系总体积;

V样:加入反应体系中样本体积;

V样总:加入提取液体积;

W:样本质量,g;

1000:细胞或细菌总数,1000万;

T:反应时间,0.5h。


注意事项:

提取液中含有使蛋白变性的成分,故按蛋白浓度计算时需要重新提取蛋白进行测定。


本试剂盒仅供科研使用!

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