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/ Products Classification 点击展开+Cat. Number | HK21150-48S |
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Chemical Name | HK21150-48S NADH氧化酶(NOX)测试盒(可见分光光度法) |
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Qty 1 |
50T/48S |
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References | NADH氧化酶NOX(EC 1.6.99.3)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,可在氧气存在下,直接将NADH氧化为NAD。该酶不仅参与NAD的再生,而且与免疫反应密切相关。
NOX能够将NADH氧化为NAD,NADH的氧化与2,6二氯酚靛蓝(DCPIP)的还原相偶联,蓝色的DCPIP被还原为无色的DCPIP,在600nm下测定蓝色DCPIP的还原速率计算出NADH氧化酶活性的大小。 需自备的仪器和用品: 可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵/匀浆器、冰、蒸馏水。 产品组成:
实验步骤: 注意:实验之前建议选择2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。 一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献) 组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离: 1) 准确称取0.1g 组织或收集500 万细胞,加入1mL 试剂R1和10μL 试剂R3,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。 2) 将匀浆600g,4℃离心5min。将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心10min。 3) 将上清液转移至另一EP 管中,即胞浆提取物,用于线粒体中泄露NOX 活性测定。 4) 沉淀即为线粒体,加入200μL 试剂R2和2μL 试剂R3,反复吹打充分混匀,用于NOX 活性测定,并用于蛋白浓度测定。 二、试剂准备 试剂R6:临用前加入4.5 mL双蒸水,用不完的试剂-20℃分装保存。 三、测定步骤 1、可见分光光度计预热30min以上,调节波长至600nm,蒸馏水调零。 2、试剂R4 37℃保温放置。 3、加样表:
将上述试剂按顺序在1mL玻璃比色皿中操作,加入试剂R6后立即混匀,同时开始计时,在600nm 波长下记录20秒时的初始吸光度A1,迅速将比色皿连同反应液一起放入37℃水浴中,准确反应1 分钟。迅速取出比色皿并擦干,记录1分20 秒时的吸光度A2。计算ΔA=A1-A2,记录ΔA 测定、ΔA 对照,ΔA=ΔA 测定-ΔA 对照。96孔板放于就近的恒温箱中,有些酶标仪带有内控温度设置的请设置为37℃,1 分钟后再次测量即可。 四、NOX 活力单位的计算 按样本蛋白浓度计算 单位的定义:每 mg 组织蛋白在反应体系中每分钟 A600 变化 0.01 定义为一个酶活力单位。 NOX(U/mg prot)=ΔA÷0.01×V反总÷(Cpr×V样) ÷T V反总:反应总体积; V样:加入样本体积; Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL; T:反应时间,1min。 注意事项: 1、粗酶液的提取必须在0℃- 4℃中操作完成,以防止酶变性失活。 2、比色皿中反应液的温度最好保持37℃,取小烧杯一只装入一定量的37℃蒸馏水,将此烧杯放入37℃水浴锅中。在反应过程中把比色皿连同反应液放在此烧杯中。 3、最好两个人同时做此实验,一个人比色,一个人计时,以保证实验结果的准确性。 4、实验时,试剂六样本在冰上放置,以免变性和失活。 5、推荐使用样本蛋白浓度计算酶活,若用样本质量计算,则需加测胞浆提取物酶活,上清和沉淀酶活之和方为总酶活。 6、附:使用样本鲜重计算公式: 单位的定义:每g 组织在反应体系中每分钟A600 变化0.01 定义为一个酶活力单位。 NOX 上清(U/g 质量)=ΔA1÷0.01×V 反总÷(W÷V 提取×V 样)÷T NOX 沉淀(U/g 质量)=ΔA2÷0.01×V 反总÷(W÷V 样总×V 样)÷T NOX(U/g 质量)= NOX 上清+ NOX 沉淀 ΔA1:上清测定值; ΔA2:沉淀测定值; V 反总:反应总体积; V 样:加入样本体积; V 提取:加入试剂R1体积; V 样总:沉淀重悬体积; W:样本质量,g; T:反应时间,1min。 本试剂盒仅供科研使用! |
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