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/ Products Classification 点击展开+Cat. Number | HK21149-48S |
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Chemical Name | Na+k+-ATP酶测试盒(酶标板法) |
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Qty 1 |
100T/48S |
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References | Na+K+- ATP酶广泛分布于植物、动物、微生物和细胞中,可催化ATP水解生成ADP和无机磷。 测定原理: Na+K+-ATP酶分解ATP生成ADP及无机磷,通过测定无机磷的量来确定ATP酶活性。 需自备的仪器和用品: 可见分光光度计/酶标仪、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、微量玻璃比色皿/96 孔板、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。 产品组成:
实验步骤: 注意:实验之前建议选择2-3 个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。 一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献) 1、细菌、细胞或组织样本的制备: 细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照每500 万细菌或细胞加入1mL 试剂R1,超声波破碎细菌或细胞(功率20%,超声3s,间隔10s,重复30 次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。 组织:称取约0.1g 组织,加入1mL 试剂R1进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。 2、血清(浆)样本:直接检测。 二、试剂准备 1、试剂R3:临用前用1 mL 蒸馏水溶解,现用现配。用不完的试剂-20℃可保存一周。 2、试剂R5:用时加入3 mL 双蒸水, 4℃保存。 3、试剂R6:用时加入5 mL 双蒸水,溶解后4℃保存一周。 4、试剂R7:用时加入5 mL 双蒸水,溶解后4℃保存一周。 5、标准品:10 μmol/mL 标准磷贮备液。将标准品20 倍稀释,即取 0.1 mL 标准品加1.9 mL 蒸馏水充分混匀,配成0.5 μmol/mL 标准磷应用液。 6、定磷剂的配制:按H2O:试剂R6:试剂R7:试剂R8=2:1:1:1的比例配制,配好的定磷剂应为浅黄色。若无色则试剂失效,若是蓝色则为磷污染,定磷剂根据实验用量现用现配。 注意:配试剂最好用新的烧杯、玻璃棒和玻璃移液器,也可以用一次性塑料器皿,避免磷污染。 三、测定步骤 1、可见分光光度计或酶标仪预热30min 以上,调节波长至660nm,蒸馏水调零。 2、酶促反应(在EP 管中加入下列试剂)
3、定磷
三、Na+K+-ATP 酶活计算 1、血清(浆)Na+K+-ATP ase 活力的计算: 定义:规定每小时每毫升血清(浆)中Na+K+- ATP 酶分解ATP 产生1μmoL 无机磷的量为一个酶活力单位。 Na+K+-ATP 酶活力(U/mL)= C 标准管×(A 测定管-A 对照管)÷(A 标准管-A 空白管)×V 总÷V 样÷T 2、组织、细菌或细胞中Na+K+- ATPase 活力的计算: (1)按蛋白浓度计算: 定义:规定每小时每毫克组织蛋白中Na+K+- ATP 酶分解ATP 产生1μmoL 无机磷的量为一个酶活力单位。 Na+K+-ATP 酶活力(U/mg prot)= C 标准管×(A 测定管-A 对照管)÷(A 标准管-A 空白管)×V 总÷(Cpr×V 样)÷T (2)按样本质量计算: 定义:规定每小时每克组织中Na+K+-ATP 酶分解ATP 产生1μmoL 无机磷的量为一个酶活力单位。 Na+K+-ATP 酶活力(U/g 质量)= C 标准管×(A 测定管-A 对照管)÷(A 标准管-A 空白管)×V 总÷(V 样÷V 样总×W)÷T (3)按细菌或细胞数量计算: 定义:规定每小时每1 万个细菌或细胞中Na+K+-ATP 酶分解ATP 产生1μmoL 无机磷的量为一个酶活力单位。 Na+K+-ATP 酶活力(U/104 cell)=C 标准管×(A 测定管-A 对照管)÷(A 标准管-A 空白管)×V 总÷(V 样÷V 样总×500)÷T C 标准管:标准管浓度; V 总:酶促反应总体积; V 样:加入样本体积; V 样总:加入试剂一体积; T:反应时间,1/6 小时; Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL; W:样本质量,g;500: 细菌或细胞总数,500 万。 注意事项: 1、由于每一个样都必须做对照,本试剂盒100 管保证测 48 份Na+K+-ATP 酶。 2、此法具有微量、灵敏、快速的特点。所以对测定所用试管要求严格无磷。 本试剂盒仅供科研使用! |
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