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/ Products Classification 点击展开+Cat. Number | HK21139-48S |
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Chemical Name | ATP含量测试盒(酶标板法) |
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Qty 1 |
100T/48S |
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References | ATP广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,是生物能量通货,能荷是描述细胞能量代谢状态的主要参数。测定ATP 含量并且计算能荷,能够反映能量代谢状态。 测定原理: HK催化葡萄糖和ATP合成6-磷酸葡萄糖,6-磷酸葡萄糖脱氢酶进一步催化6-磷酸葡萄糖脱氢生成NADPH,NADPH在340nm有特征吸收峰,NADPH和ATP含量成正比,以此反应ATP含量。 需自备的仪器和用品: 紫外分光光度计/酶标仪、水浴锅、台式离心机、可调式移液枪、微量石英比色皿/96孔UV板、研钵/匀浆器、蒸馏水和氯仿。 产品组成:
实验步骤: 注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。 一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献) 1、血清(浆)中ATP 的提取:按照血清(浆)体积(mL):提取液体积(mL)为 1:5~10的比例(建议取约0.1mL 血清(浆),加入1mL提取液),充分震荡,10000g,4℃离心10min;取上清液至另一EP 管中,加入500uL的氯仿充分震荡混匀,10000g 4℃离心3min,取上清,置冰上待测(不可用于蛋白质含量测定)。 2、组织中ATP 的提取:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液),进行冰浴匀浆,8000g 4℃离心10min,取上清至另一EP管中,加入500uL的氯仿充分震荡混匀,10000g 4℃离心3min,取上清,置冰上待测(不可用于蛋白质含量测定)。 3、细胞或细菌中ATP的提取:先收集细胞或细菌到离心管内,弃上清,按照细菌或细胞数量(10个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL 提取液),超声波破碎1min(冰浴,强度20%或200W,超声2s,停1s),10000g 4℃离心10min;取上清液至另一EP管中,加入500uL的氯仿充分震荡混匀,10000g 4℃离心3min,取上清,置冰上待测(不可用于蛋白质含量测定)。 二、试剂准备 1、试剂R2:临用前加入3.5 mL蒸馏水充分溶解,可加热促进溶解,用不完的试剂4℃保存4周; 2、试剂R4:临用前取1支加入0.2 mL蒸馏水溶解,用不完的试剂-20℃分装保存2周,避免反复冻融(1支粉剂溶解后可做100T,为了延长使用时间,此产品多给1支粉剂); 3、试剂R5:临用前加入1 mL蒸馏水充分溶解,用不完的试剂-20℃分装保存4周,避免反复冻融; 4、试剂R6:临用前取1支加入0.25 mL蒸馏水备用,用不完的试剂-20℃分装保存2周,避免反复冻融(1支粉剂溶解后可做100T,为了延长使用时间,此产品多给1支粉剂); 5、标准品: 5 mg ATP。临用前加入0.826 mL蒸馏水配成10 umolmL的ATP标准溶液,用不完的试剂-20℃分装保存4周,避免反复冻融; 6、工作液的配制:临用前请按试剂R2(mL):试剂R3(mL):试剂R4(mL):试剂R5(mL):试剂R6(mL)=1: 1:0.1: 0.4:0.1的比例配制(2.6mL,约50T的量),现配现用。 三、测定步骤 1、紫外分光光度计/酶标仪预热30 min以上,调节波长到340nm,蒸馏水调零。 2、将10umol/mL的 ATP标准溶液用蒸馏水稀释16倍即0.625umolmL标准溶液备用。 3、加样表:在微量石英比色皿或96孔UV板中加入
四、ATP含量计算 1、血清(浆)中ATP含量计算 ATP含量(umolmL)=ΔA测定÷(ΔA标准÷C标准)×(V提取+V血清(浆))÷V血清(浆) 2、组织、细菌或细胞中ATP含量计算 (1)按样本质量计算 ATP 含量(umolg质量)=ΔA测定÷(ΔA标准÷C标准)xV提取÷W (2)按细菌或细胞数量计算 ATP含量(umol/10cell)=ΔA测定÷(ΔA标准÷C标准)×V提取÷5 C标准:标准液浓度; V提取:加入的提取液体积; V血清(血浆):血清(浆)体积; W:样本质量,g; 5:细胞或细菌总数,5×106个。 注意事项: 1、加入提取液离心后的上清若为浑浊为正常现象。 2、提取过程严格在冰浴条件下进行。 3、如果吸光值大于1.5,建议将样本用提取液稀释后进行测定。 4、提取液低温条件下,可能有结晶析出,放于60℃水浴加热溶解即可,不影响使用。 本试剂盒仅供科研使用! |
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